Đực hóa cá rô phi Oreochromis niloticus bằng phương pháp ngâm trong nước pha spironolacton

SP thường có hiệu ứng phụ là kháng androgen hay còn gọi là hiệu ứng (phụ) nữ hóa như chứng vú to và bất lực ở nam giới khi điều trị lâu dài, rậm lông – tóc ở phụ nữ, rối loạn kinh nguyệt, căng tức vú ở phụ nữ, thay đổi giọng nói ở cả hai giới.

Điều nghịch lý được Howell et al., (1994) phát hiện là hiệu ứng đực hóa của SP trên cá Ăn muỗi Gambusia affinis.

Tất cả cá Ăn muỗi cái trưởng thành sau 21 ngày sống trong nước có hàm lượng SP bằng 0,1; 1,0 và 2,5 mg/l đã có vây hậu môn biến thành gonopodium (“chân sinh dục” – một dạng ống dẫn tinh).

Sự thay đổi chỉ diễn ra ở sự biểu hiện đặc điểm sinh dục phụ đực, không có sự đổi giới tính (tuyến sinh dục).

Các cá cái thí nghiệm vẫn mang những noãn bào hoặc phôi đang phát triển.

Đây là một gợi ý để sử dụng SP như một chất đực hóa cá, rẻ, dễ kiếm và tương đối an toàn cho người.

Chúng tôi đã thử tác dụng của SP trên cá Rô phi và Bảy màu (ở một bài khác), so sánh với việc không xử lý đực hóa (đối chứng ĐC) và xử lý bằng methyltestosteron (MT).

Phương pháp nghiên cứu

Thí nghiệm được tiến hành tại Trung tâm Quốc gia Giống Thủy sản Nước ngọt Nam Bộ (huyện Cái Bè, Tiền Giang, từ 9/2010 đến 6/2011.

Nhiệt độ nước thường xuyên trên 25oC và xấp xỉ 27 – 28 oC, các điều kiện thủy lý hóa khác là khá thuận lợi.

Cá thí nghiệm là Rô phi Oreochromis niloticus, được lấy tại chỗ, khi đã tiêu hết noãn hoàng và được xác định là 7 ngày tuổi (kể từ lúc nở).

Cá đối chứng (ĐC) và thí nghiệm đực hóa sau xử lý được ương nuôi trong giai riêng theo từng nghiệm thức (mỗi nghiệm thức có 100 con) trong những điều kiện như nhau được áp dụng tại cơ sở.

Các nghiệm thức như sau : MT 2,5 – 100 cá bột 7 ngày tuổi được ngâm trong túi polyethylen chứa 2 lít nước với nồng độ methyltesteron (MT) (Methyltesterone, Aburaihan Co.

Tehran – Iran) 2,5 mg /l , với khoảng 4 lít O2 và buộc kín trong 2 giờ.

Một cách tương tự là SP2,5 , SP5,0 và SP12,5 là các nghiệm thức ứng với hoạt chất là Spironolacton (Verospiron, Hungary) với các nồng độ lần lượt là 2,5 ; 5,0 và 12,5 mg/l.

Trước khi pha vào nước để xử lý, các viên thuốc MT và SP được nghiền kỹ và hòa tan trong cồn ethanol.

Nồng độ cồn trong nước xử lý cá được tính toán không quá 1%.

Sau khi xử lý cá được ương trong giai (30x30cm) độ sâu nước trong giai là 30 cm.

Mỗi giai (theo các nghiệm thức) ban đầu có 100 cá bột.

Việc cho ăn và chăm sóc cá theo phương pháp thường quy.

Tỷ lệ sống của cá ĐC và trong các nghiệm thức được xác định sau 21 ngày ương nghĩa là khi cá ở tuổi 28 ngày, tương đương với tuổi cá được đực hóa bằng cách cho thức ăn có trộn MT khi kết thúc việc xử lý và đạt tuổi cá hương trong phương pháp thường quy.

Việc xác định giới tính (tỷ lệ cá đực) được tiến hành sau 60 ngày ương trong 30 mẫu theo phương pháp của Guerrero & Shelton (1974).

Các chỉ tiêu theo dõi gồm tỷ lệ đực hóa [(tỷ lệ cá đực của nghiệm thức) – (tỷ lệ đực đối chứng)] x (tỷ lệ cái đối chứng) -1, Hiệu suất đực hóa (HSĐH) bằng [(tỷ lệ đực) x (tỷ lệ sống)].

Do việc xác định tỷ lệ sống (ở tuổi 28 ngày kể từ khi nở) và tỷ lệ đực (ở tuổi 60 ngày) nên hiệu suất đực hóa coi như được tính ở thời điểm cá đạt tuổi 28 ngày, tuổi kết thúc giai đoạn cá hương.

Mỗi nghiệm thức được lặp lại 3 lần.

Kết quả là giá trị trung bình của ba lần thí nghiệm và ± độ lệch chuẩn (SD Standard Deviation -).

Trắc nghiệm χ^2 (“khi bình phương”) và bảng Pearson (Plokhinsky, Плохинский, 1961) được dùng để so sánh các kết quả.

Kết quả nghiên cứu

Số liệu trong Bảng 1 cho thấy tỷ lệ sống của cá sau khi được xử lý và quá trình ương 21 ngày là khá cao.

Sự khác biệt giữa các nghiệm thức với nhau và với đối chứng là không có ý nghĩa thống kê.

Trong một nghiên cứu trước đây của chúng tôi trên cá Rô phi với MT và quy trình tương tự, tỷ lệ sống sau 3 tháng ương là 93,33 – 95,89% (Nguyễn Tường Anh & Ngô Đức Quân, 2011).

Trong khi đó, tỷ lệ sống sau 21 ngày ương với thức ăn có pha thêm MT có thể chỉ là 69,51 – 83,4% (Nguyễn Văn Tư, 2006).

So với kết quả của các nghiên cứu khác (Lê Ngọc Thảo & Nguyễn Tường Anh, 2007, Lê Văn Thắng & Phạm Anh Tuấn, 2000) có thể thấy nguyên nhân của việc đạt được tỷ lệ sống cao của cá Rô phi được đực hóa bằng cách ngâm trong hormon theo phương pháp của chúng tôi là cá thí nghiệm được ngâm trong thời gian ngắn (2 – 4 giờ) ở môi trường có hàm lượng hormon thấp, giàu oxy mà không sục khí và sau đó hưởng một chế độ dinh dưỡng đa dạng và gần với tự nhiên hơn (thức ăn không phải chỉ có bột cá và vitamin C).

Quy trình đực hóa cá Rô phi như trên được xây dựng trên cơ sở đặc tính sinh học của hormon steroid và của chính loài cá này (Lê Ngọc Thảo & Nguyễn Tường Anh, 2007; Nguyễn Tường Anh & Ngô Đức Quân, 2011).

Khái niệm hiệu suất đực hóa được chúng tôi đưa ra từ 1998 (Trịnh Quốc Trọng & Nguyễn Tường Anh, 2000) có tính đến ảnh hưởng của việc xử lý bằng hormon lên tỷ lệ đực và tỷ lệ sống, cho phép đánh giá hiệu quả thực sự của phương pháp đực hóa, tránh được trường hợp đánh giá sai khi tỷ lệ đực rất cao (như do dùng liều hormon quá cao) nhưng tỷ lệ sống lại thấp.

Số liệu ở Bảng 1 cũng cho thấy MT và SP ở tất cả các liều ngâm đều có tác dụng đực hóa.

Nếu căn cứ vào hiệu suất đực hóa, thì MT2,5 cho kết quả 62,8% thấp hơn những gì chúng tôi đã đạt được trước đây: liều MT (Sigma – Aldrich ) 2,4 mg/l cho HSĐH bằng 84% (Lê Ngọc Thảo, Nguyễn Tường Anh, 2007).

Liều MT (Fluka, Hà Lan) 2 mg/l có HSĐH bằng 80,2 – 85,3% (Nguyễn Tường Anh & Ngô Đức Quân, 2011).

Trong một thí nghiệm khác, chưa công bố (dạng luận văn cao học), liều MT (Fluka, Hà Lan) 2 mg/l cho HSĐH bằng 82,3% còn liều MT (Ninh Ba, Trung Quốc) 2 mg/l có HSĐH bằng 77,2% (Nguyễn Tường Anh, Vũ Thành Nhân, 2012 – chưa công bố ).

Có thể nguyên nhân của sự khác biệt ở đây là hoạt tính không đồng đều của các chế phẩm hormon đã sử dụng: trong thí nghiệm của báo cáo này MT là thuốc viên Methyltestosterone 25 của Aburaihan, Iran.

Ngoài ra, cũng không thể loại trừ những khác biệt về điều kiện thí nghiệm.

Một bài tổng quan rút ra nhận xét, sự hình thành giới tính ở cá, điển hình là cá Rô phi có sự tham gia của ba nhóm yếu tố là 1.

Nhiễm sắc thể giới tính (XY, XX) trong đó có gen định đoạt giới tính ở tất cả các lớp Động vật có xương sống trừ lớp Có vú là Dmrt 1 và tác nhân biệt hóa cuối cùng là androgen; 2.

Các yếu tố môi trường mà rõ nhất là nhiệt độ và 3.

Các yếu tố di truyền thứ yếu (ngoài các nhiễm sắc thể giới tính, Karayyucel et al., 2004; Baroiller et al.,2009; Paul-Prasanth et al., 2011).

HSĐH của MT2,5 và SP2,5 có sự khác biệt nhỏ nhất và không có ý nghĩa.

HSĐH của các nghiệm thức còn lại là khác nhau một cách có ý nghĩa thống kê.

HSĐH cao nhất với liều SP bằng 12,5 mg/l là 80,3 ± 3.1%.

Điều này có ý nghĩa là từ 100 cá được xử lý và ương ban đầu có thể thu được khoảng 80 cá đực (trừ đi số cá đã hao hụt và số cá cái).

Liều 12,5 mg/l của SP chưa hẳn là tối ưu về HSĐH.

Chúng tôi nghĩ có thể tăng liều SP lên hơn 12,5 mg/l vì chưa thấy sự giảm tỷ lệ sống khi tăng liều xử lý.

Điều lý thú ở đây là trong khi SP được khuyến cáo là có tác dụng phụ kháng androgen hay nữ hóa (antiandrogenic or feminizing side effects) trên người và các động vật có vú khác, thì cũng như Howell et al.

(1994), trên cá Ăn muỗi Gambusia affinis, chúng tôi thấy SP (như một điều nghịch lý) có tác dụng đực hóa (masculinizing effect) trên cá Rô phi.

Do SP là thuốc dùng cho người, có thể yên tâm khi đề cập vấn đề vệ sinh an toàn thực phẩm.